?微藻是水中微小的“綠色工廠”，研究它們需要先讓這些活潑的小生命“安靜”下來，固定在載玻片上，才能用顯微鏡觀察它們的形態(tài)和結構。這個過程就像給微藻拍一張清晰的“證件照”。以下是具體操作步驟和注意事項，簡單易懂，一起學起來！
一、主要操作步驟
1. 取樣——找到目標微藻
用干凈的采樣瓶（或試管）采集水樣，避免污染。如果是培養(yǎng)的微藻，可直接用移液槍吸取少量樣本。
2. 固定——讓微藻“定住不動”
根據(jù)微藻類型選擇固定劑（常用福爾馬林或盧戈氏碘液）：
– 福爾馬林：1-4%濃度，每10毫升水樣加1-2滴，搖晃混勻。
– 盧戈氏碘液：直接滴入水樣至顏色變淺棕色（微藻被染色并固定）。
靜置10-30分鐘，讓微藻沉淀到容器底部。
3. 清洗——去除多余化學試劑
用吸管吸去上層液體，加入少量清水輕輕沖洗沉淀的微藻，重復2-3次（避免沖散樣本）。
4. 制片——把微藻“粘”在玻片上
– 用吸管吸取沉淀的微藻，滴1-2滴在載玻片中央。
– 蓋上蓋玻片（從一側緩慢放下，避免產(chǎn)生氣泡）。
– 若樣本太稀，可自然晾干幾秒后再蓋片。
5. 鏡檢——顯微鏡下的“微世界”
– 將載玻片放在顯微鏡載物臺上，先用低倍物鏡（如10×）找到目標區(qū)域。
– 切換高倍物鏡（如40×）觀察細節(jié)，調節(jié)細準焦螺旋使圖像清晰。
– 拍照或記錄觀察到的微藻形態(tài)（如形狀、顏色、結構）。
二、注意事項——安全又高效
1. 安全第一！
– 福爾馬林、戊二醛等有刺激性，需戴手套和口罩，在通風處操作。
– 廢液勿直接倒入下水道，需收集后按實驗室規(guī)范處理。
2. 固定時間別太久
– 福爾馬林固定超過1小時可能使細胞變形，及時清洗或觀察。
– 盧戈氏碘液染色后需盡快觀察，避免褪色。
3. 濃度要精準
– 固定劑濃度過高會破壞細胞，過低則固定不徹底。
– 新手建議先用低濃度（如1%福爾馬林），逐步調整。
4. 樣本別太密或太稀
– 微藻密度過高時，可用清水稀釋；過稀則需離心濃縮。
5. 蓋玻片要輕拿輕放
– 氣泡會影響觀察，蓋片時傾斜45°緩慢貼合液體。
6. 顯微鏡使用小技巧
– 高倍鏡下勿用粗準焦螺旋，避免壓碎玻片。
– 光線調至柔和（太亮會過曝，太暗看不清）。
三、為什么需要固定微藻？
微藻在水中會游動或漂浮，直接觀察可能模糊不清。固定后不僅能“定格”它們的形態(tài)，還能殺死微生物，方便長期保存樣本。比如：
– 福爾馬林適合保存細胞結構；
– 盧戈氏碘液能同時染色淀粉等結構，讓細胞更清晰。
微藻固定鏡檢就像給這些“微觀小精靈”按下暫停鍵，幫助科學家看清它們的真面目。只需按步驟操作，注意安全細節(jié)，你也能輕松探索水中的奇妙世界！如果第一次失敗，別氣餒——多練習幾次，就能拍出微藻的“完美證件照”啦！
